МОРФОМЕТРИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ НЕЙРОНОВ СПИННОМОЗГОВЫХ УЗЛОВ И СОЛНЕЧНОГО СПЛЕТЕНИЯ ОВЕЦ ПРИ ФАСЦИОЛЕЗЕ (F. HEPATICA)
Шакирова Г.Р.
Башкирский государственный аграрный университет, Уфа
Ряд исследователей связывают влияние нервной системы на метаболические процессы с деятельностью симпатического отдела нервной системы, с его адаптационно–трофической функцией (Орбели Л.А., 1966; Говырин В.А., 1967). Показано, что при патологических процессах в организме наиболее интенсивно поражается афферентное звено. Кроме того, афферентные приборы при патологических состояниях являются морфологическим субстратом многообразных болевых ощущений (Никифоров А.Ф., 1973; Швалев В.Н., Сосунов А.А., Гуски Г., 1992).
Несмотря на значительные достижения нейроморфологии многие вопросы о компенсаторно – приспособительных изменениях в периферической нервной системе все еще остаются спорными и нерешенными. В литературе недостаточно полно изучена ультраструктура периферической нервной системы у овец, неизвестны деструктивные и компенсаторно–приспособительные изменения при фасциолезе. В этой связи возникла необходимость в изучении спинномозговых узлов (СМУ) и солнечного сплетения (СС) у овец в норме и эксперименте. Моделирование экспериментального фасциолеза на фоне использования биологически активных веществ (премикс “Мамил”) проведено совместно с д.в.н., профессором Нурхаметовым Х.Г. Эксперимент проводили на валухах порды соаетский меринос в возрасте 1,5-2 года с живой массой 40-42 кг. В 1–3 группах овец применили для инвазирования по 300 адолескарий. Животных 1 и 2 групп дегельминтизировали на 51 день (ювенальная стадия паразита) 15,8 %-ной суспензией ацемидофена в дозе 1 мл/кг. 3 группа состояла из клинически здоровых животных. Овцам 2 группы после дегельминтизации скармливали комбикормом с премиксом “Мамил”. 10 дней премикс давали в лечебной, а затем до конца опыта скармливали в профилактической дозе. Овцы 4 группы являлись контролем заражения.
На препаратах, окрашенных гематоксилином и эозином, окулярной сеткой и окулярной линейкой измеряли малый и большой диаметры ядра и цитоплазмы нейронов СМУ, СС. Показатели объема перикариона нейронов, их ядер, ядерно–цитоплазменное отношение определяли по формуле Ташке К. (1980). Цифровые данные обрабатывали методом вариационной статистики с проверкой достоверности результатов с помощью критерия Стьюдента. Ультратонкие срезы изучали под электронным микроскопом JEM–100S.
У здоровых овец в СМУ овец имеются крупные, средние и мелкие нейроны. Средние показатели объемов тел малых нейронов равняются 7273,87±63,20 мкм³, средних – 18530,80 ±45,62 мкм³, крупных – 51340,04±842,30 мкм³. Средний объем ядер для малых нейронов – 866,88±21,71 мкм³, средних – 1488,07±0,16 мкм³, крупных – 2189,23±16,80 мкм³. Ядерно – цитоплазменное отношение составляет в малых 0,18, в средних 0,09, в крупных 0,05. По особенностям строения белоксинтезирующего аппарата выделяем нейроны с глыбчатым и диффузным распределением цистерн гранулярного эндоплазматического ретикулума и свободно расположенных полисом. Имеются клетки, в которых глыбки базофильного вещества выражены нечетко. Также встречается незначительное количество малодифференцированных нейронов со слабо развитым белоксинтезирующим аппаратом. Глыбки базофильного вещества разделяются рыхлыми пучками нейрофиламентов и микротрубочек. Пластинчатый комплекс в нейронах хорошо развит и часто локализуется в области отхождения аксона.
Нейроны в СС овцы мультиполярны, имеют один нейрит, 3-5 длинных дендритов. Средние показатели объемов тел малых нейронов составляют 6595,26±18,36 мкм³, средних – 14333,84±56,19 мкм³, крупных – 23815,49±427,52 мкм³. Средний объем ядер для малых нейронов 640,42±4,29 мкм³, средних – 901,04±4,23 мкм³, крупных 1273,37±26,37 мкм³. Ядерно – цитоплазменное отношение составляет в малых - 0,11, в средних – 0,07, в крупных 0,06. Нейроны располагаются близко друг к другу и отделяются узкими цитоплазматическими отростками сателлитов. Ядра в большинстве нейронов имеют низкую электронную плотность, в кариоплазме содержится небольшое число мелких глыбок гетерохроматина и крупное ядрышко. Нейроны солнечного сплетения характеризуются высоким энергетическим обменом и содержат большое количество митохондрий. В большинстве нейронов белоксинтезирующий аппарат организован в глыбки, которые могут быть мелкими, средними, крупными и ограничены небольшими пучками нейро филаментов. Цистерны эндоплазматического ретикулума небольшой длины с узкими просветами, однако, имеются также расширенные цистерны, с частично лизированными мембранами.
Исследование морфометрических показателей при фасциолезе выявило увеличение размеров многих нейронов, что является отражением компенсаторно – приспособительных реакций. В СМУ средние показатели объемов тел малых нейронов составляют 6680,75±29,02 мкм³, средних – 19581,84±58,05 мкм³, крупных-66516,32±2681,34 мкм³. После дегельминтизации происходит относительное снижение этих показателей (Таблица №1, 2).
Таблица №1
Морфометрические показатели нейронов в СМУ и СС овец после применения ацемидофена в острой стадии заражения, мкм³
Орган |
Нейроны |
MV1 цит. ±mV1 цит. |
MV2 ядра ±mV2 ядра |
ЯЦО |
Спинальные ганглии |
Крупные |
68793,33±1207,93 |
1021,10±17,90 |
0,02 |
Средние |
17819,23±66,45 |
655,12±3,24 |
0,04 |
|
Мелкие |
7024,82±46,39 |
620,40±2,12 |
0,12 |
|
Солнечное сплетение |
Крупные |
32422,87±174,21 |
866,62±5,38 |
0,03 |
Средние |
15146,57±57,25 |
570,63±0,10 |
0,04 |
|
Мелкие |
6918,25±56,98 |
299,29±14,46 |
0,06 |
Таблица №2
Морфометрические показатели нейронов в СМУ и СС овец после применения ацемидофена и стимуляции премиксом Мамил в острой стадии заражения, мкм³
Орган |
Нейроны |
MV1 цит. ±mV1 цит. |
MV2 ядра ±mV2 ядра |
ЯЦО |
Спинальные ганглии |
Крупные |
53587,88±2151,13 |
527,83±35,52 |
0,01 |
Средние |
19515,58±160,78 |
257,96±0,03 |
0,01 |
|
Мелкие |
6223,34±13,79 |
93,54±0,002 |
0,02 |
|
Солнечное сплетение |
Крупные |
31215,63±84,87 |
1600,33±2,29 |
0,06 |
Средние |
15713,31±155,76 |
1152,26±4,34 |
0,08 |
|
Мелкие |
6728,84±39,45 |
737,23±5,64 |
0,18 |
Таким образом, относительное снижение морфометрических показателей нейронов в СМУ и СС показывает, что при дегельминтизации животных целесообразно дополнительное применение биологически активных веществ.